Preparación de sangre en fresco

INTRODUCCIÓN

Al teñir las muestras corremos algunos riesgos como que las proteínas se coagulen, o la solubilización de los hidratos de carbono y las grasas.
Con esta práctica, al no usar ningún tipo de tinción, podremos ver la estructura natural de las células, o los cambios estructurales en procesos patológicos.

PARA REALIZAR LA PRÁCTICA.

Esta práctica la podemos hacer con sangre venosa o con sangre capilar.

MATERIAL.

• Microscopio
• Portas y cubres
• Papel de filtro
• Con sangre capilar: lancetas, gasas, alcohol 70º y capilares
• Con sangre venosa: pipetas pasteur, tubo de ensayo, gradilla y bolsa de hemodonación.

MUESTRA.

Sangre capilar, o venosa.

PROCEDIMIENTO

Con sangre capilar: 

Haremos la punción en la yema de los dedos 

1.. Desinfectamos la zona con una gasa humedecida en alcohol, y dejamos secar. 

2.. Hacemos la punción con la lanceta, y desechamos la primera gota, ya que está contaminada con el alcohol. Para ello retiramos la gota con una gasa. 

3.. Hacemos una leve presión en el dedo y recogemos la sangre con un capilar.

4.. Dejamos caer unas dos gotas de sangre del capilar en un porta, y cubrimos con el cubre.

5.. Colocamos el porta en la platina del microscopio, y con el objetivo de 40x observamos la muestra.

Con sangre venosa:

Cogemos una porción de sangre venosa de una bolsa de hemodonación

1.. Llenamos una pequeña parte del tubo de ensayo con sangre de la bolsa de hemodonación

2.. Colocamos el tubo de ensayo en una gradilla, y con la pipeta Pasteur cogemos una pequeña cantidad de sangre 

3.. Vertimos unas dos gotas en el portaobjetos y cubrimos con el cubreobjetos.

4.. Colocamos el porta en la platina y observamos la muestra con el objetivo de 40x

LECTURA DE LOS RESULTADOS.

  

Con esta práctica podemos ver los glóbulos rojos (hematíes) plaquetas, y glóbulos blancos (leucocitos).